公司產(chǎn)品僅供科研研究使用、不得用于臨床診斷！

保存條件：常溫運(yùn)輸，室溫或者 4℃可保存 6 個(gè)月。
產(chǎn)品介紹：
植物助提劑 PLANTaid 是針對植物 RNA 提取時(shí)，針對富含多糖多酚等不容易清除的特點(diǎn)設(shè)計(jì)的一種多糖多酚植物 RNA 提取的輔助劑，主要成份為聚乙烯吡咯烷酮等高分子化合物。它們可以和多糖多酚等雜質(zhì)結(jié)合，通過離心去除。它和絕大多數(shù)常用的使用高離序鹽（chaotropic salts ）如異硫氰酸胍的 RNA 提取方法兼容。使用方法簡便，只要在正常的 RNA 提取步驟中加一步驟即可。將 PLANTaid 加入裂解液后，研磨，勻漿，PLANTaid 和多糖多酚等雜質(zhì)結(jié)合，離心將 PLANTaid，多糖多酚和任何不溶解的雜質(zhì)去除,取上清就可以繼續(xù)后面的正常RNA 提取步驟。
注意事項(xiàng)：
1.PLANTaid使用過量可能降低RNA產(chǎn)量，由于不同植物中所含多糖，多酚量變異性很大，因此最佳用量應(yīng)該在實(shí)驗(yàn)中適當(dāng)調(diào)整。
2.如果處理的植物量特別少，按照下面比例計(jì)算所需裂解液＋PLANTaid 總體積少于200μl的情況下應(yīng)該使用不少于200μl的總體積
來提取植物RNA，具體為175μl裂解液＋25μl PLANTaid= 200μl。
使用方法：
1.估計(jì)待處理植物體積的方法，我們按照100mg/100μl的比例來估計(jì)待處理植物體積。
2.查看使用的RNA提取手冊（方法）的裂解液和植物處理量之間的比例
如果裂解液：植物處理量（體積比）≤9:1,則在所需裂解液中加入九分之一裂解液體積的PLANTaid;
如果裂解液：植物處理量（體積比）>9:1,則在所需裂解液中加入和植物處理量等體積的PLANTaid。
3.舉例說明：
1）如果RNA提取手冊上面裂解液：植物處理量=5:1,植物處理量為100mg(我們認(rèn)為體積為100μl)，所需裂解液為100μl×5= 500μl，
再加入500μl×1/9＝55.6μl的PLANTaid. 2）如果RNA提取手冊上面裂解液：植物處理量=10:1, 植物處理量為100mg(我們認(rèn)為體積為100μl)，所需裂解液為100μl×10 = 1000μl，再加入100μl即和植物處理量等體積的PLANTaid。
3）使用上面的混和液按照正常操作步驟研磨，勻漿處理后，將裂解物用最高速（12000-14000rpm）室溫下離心5 sec。不溶的細(xì)胞碎片，PLANTaid和它結(jié)合的多糖多酚等雜質(zhì)可以通過此離心步驟去除。

PCR 反應(yīng)需要使用哪些試劑和設(shè)備？

試劑:
模板DNA：PCR反應(yīng)需要模板DNA，如從細(xì)胞、組織、血液中提取DNA等；引物：PCR反應(yīng)的兩個(gè)引物，分別與模板DNA的兩端配對擴(kuò)增所需的特定區(qū)域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；dNTPs：PCR反應(yīng)中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細(xì)胞分裂、DNA合成等生物學(xué)過程，用于PCR擴(kuò)增的模板DNA鏈的延伸和擴(kuò)增；Taq DNA聚合酶：PCR反應(yīng)需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴(kuò)增DNA鏈；PCR buffer溶液：對PCR反應(yīng)具有緩沖作用，調(diào)節(jié)反應(yīng)pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機(jī)化合物如甲醛，可增強(qiáng)PCR反應(yīng)特異性，從而提高反應(yīng)效率；酶切體系：PCR擴(kuò)增往往涉及到重組、構(gòu)建和測序等等實(shí)驗(yàn)步驟，常常需要進(jìn)行酶切操作。MARK:一種分子量標(biāo)準(zhǔn)，用來判別DNA片段大小的工具。DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應(yīng)產(chǎn)物；
設(shè)備：
PCR儀：用于控制反應(yīng)溫度，保證PCR反應(yīng)時(shí)不同溫度環(huán)節(jié)的嚴(yán)格控制；電泳槽：用于分離PCR擴(kuò)增產(chǎn)物；核酸提取儀：從組織樣本中全自動(dòng)提取核酸。 這些試劑和設(shè)備在PCR分子生物學(xué)技術(shù)中均是，只有在有序齊全的基礎(chǔ)上，才能進(jìn)行PCR反應(yīng)并得出準(zhǔn)確結(jié)果。

PCR相關(guān)基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)：

PCR反應(yīng)基本步驟一般的聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)由20到35個(gè)循環(huán)組成，每個(gè)循環(huán)包括以下3個(gè)步驟：

一、變性：

利用高溫（93-98℃）使雙鏈DNA分離。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個(gè)循環(huán)之前，通常加熱長一些時(shí)間以確保模板和引物分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時(shí)間1-2分鐘，接下來PCR儀就控制溫度進(jìn)入循環(huán)階段。

二、退火或稱接合,復(fù)性：

在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結(jié)合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點(diǎn)5℃。錯(cuò)誤的退火溫度可能導(dǎo)致引物不與模板結(jié)合或者錯(cuò)誤地結(jié)合。該步驟時(shí)間1-2分鐘。

三、延伸：

DNA聚合酶由降溫時(shí)結(jié)合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補(bǔ)鏈。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時(shí)間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度。傳統(tǒng)的Taq估計(jì)合成1000bp/min、較新的Tbr（來自于嗜熱菌Thermus brockianus）約40秒、商業(yè)公司生產(chǎn)的融合型聚合酶僅需約10-15秒。

PCR反應(yīng)條件優(yōu)化：

1、變性溫度和時(shí)間：

保證模板DNA解鏈?zhǔn)潜ＷC整個(gè)PCR擴(kuò)增成功的關(guān)鍵。加熱90~95°C, 30~60s，再復(fù)雜的DNA 分子也可變性為單鏈。溫度過高或高溫持續(xù)時(shí)間過長，可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害。

2、復(fù)性溫度和時(shí)間:

PCR擴(kuò)增特異性取決于復(fù)性過程中引物與模板的結(jié)合。復(fù)性溫度越高，產(chǎn)物特異性越高。復(fù)性溫度越低，產(chǎn)物特異性越低。需根據(jù)引物的Tm值具體設(shè)定。

3、延伸溫度和時(shí)間:

一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間。引物小于16個(gè)核苷酸時(shí)，過高的延伸溫度不利于引物與模板的結(jié)合，可以緩慢升溫到70~75°C。延伸反應(yīng)時(shí)間，可根據(jù)待擴(kuò)增片段的長度而定，小于1kb, 1min足夠；大于1kb需加長延伸時(shí)間。Taq酶可根據(jù)1kb/min增加時(shí)間。這里需要注意，延伸時(shí)間過長可能出現(xiàn)非特異擴(kuò)增。因此需要設(shè)置恰到好處的延伸時(shí)間。

4、循環(huán)數(shù):

其他參數(shù)選定后，PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度。理論上說20?25次循環(huán)后，PCR產(chǎn)物的積累即可達(dá)到最大值，實(shí)際操作中由于每步反應(yīng)的產(chǎn)率不可能達(dá)到100%，因此不管模板濃度是多少，20~30次是比較合理的循環(huán)次數(shù)。循環(huán)次數(shù)越多，非特異擴(kuò)增增加。

公司正在出售的產(chǎn)品：